{"id":36111,"date":"2016-01-25T17:17:11","date_gmt":"2016-01-25T16:17:11","guid":{"rendered":"http:\/\/www.revista-portalesmedicos.com\/revista-medica\/?p=36111"},"modified":"2016-01-25T17:19:43","modified_gmt":"2016-01-25T16:19:43","slug":"hemocultivos-cuando-como","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/www.revista-portalesmedicos.com\/revista-medica\/hemocultivos-cuando-como\/","title":{"rendered":"Hemocultivos: \u00bfCu\u00e1ndo? \u00bfC\u00f3mo?"},"content":{"rendered":"<h1 style=\"text-align: left;\"><strong>Hemocultivos: \u00bfCu\u00e1ndo? \u00bfC\u00f3mo?<\/strong><\/h1>\n<p style=\"text-align: justify;\">Conocer cu\u00e1les son las recomendaciones, basadas en la evidencia disponible, para la realizaci\u00f3n de una correcta t\u00e9cnica de extracci\u00f3n de hemocultivos.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><!--more--><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong>Hemocultivos: \u00bfCu\u00e1ndo? \u00bfC\u00f3mo?<\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Oiane Bidaguren L\u00f3pez de Larruzea <sup>1<\/sup>; Andone Esesumaga Torrontegui <sup>1<\/sup>; Sonia de Luis \u00c1lvarez <sup>1<\/sup>; Cristina Sampedro Suarez <sup>1<\/sup><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><sup>1 <\/sup>Enfermera. OSI Bilbao &#8211; Basurto<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong><u>Resumen:<\/u><\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong>Introducci\u00f3n:<\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Los hemocultivos son la principal herramienta para el diagn\u00f3stico de la bacteriemia. Numerosos estudios demuestran que la supervivencia de los pacientes s\u00e9pticos aumenta entre un 30 y 40% cuando se conoce el microorganismo causal y el paciente recibe el tratamiento antibi\u00f3tico adecuado. Sin embargo, los resultados falsamente positivos, que pueden llegar a representar casi el 50%, conllevan importantes consecuencias, como son: un incremento de la carga asistencial, y un aumento de los costes del laboratorio, de la estancia hospitalaria y de la morbilidad para el paciente. Por este motivo es necesario conocer la correcta t\u00e9cnica de extracci\u00f3n, transporte y procesamiento.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong>Objetivo:<\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong>Metodolog\u00eda:<\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Se realiza una revisi\u00f3n de la literatura utilizando las palabras clave: hemocultivo, contaminado, antis\u00e9ptico, t\u00e9cnica y extracci\u00f3n. Bases de datos: Doyma, La Biblioteca Cochrane Plus, Scielo, Cuiden e Instituto Joanna Briggs. Metabuscadores: Clinical Key y Google Acad\u00e9mico.<\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li>Criterios de inclusi\u00f3n: Se han seleccionado los art\u00edculos publicados entre 2010-2015; en castellano, ingl\u00e9s y portugu\u00e9s. S\u00f3lo se han incluido los art\u00edculos con texto completo. Inicialmente los art\u00edculos son descartados por t\u00edtulo.<\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong>Resultados:<\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Se recuperan un total de 93 y tras una lectura cr\u00edtica por investigadores independientes, se seleccionan 15: 6 protocolos, 4 revisiones bibliogr\u00e1ficas y 5 estudios cuantitativos (semiexperimentales y observacionales). Entre las principales recomendaciones destacan:<\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li>Realizar t\u00e9cnica as\u00e9ptica pero con guantes est\u00e9riles<\/li>\n<li>Desinfecci\u00f3n de la piel con desinfectantes de base alcoh\u00f3lica. La mayor\u00eda de los autores coinciden en recomendar dos desinfectantes: primero alcohol isoprop\u00edlico 70\u00ba y en segundo lugar povidona yodada o clorhexidina alcoh\u00f3lica, siempre respetando el tiempo de secado.<\/li>\n<li>Desinfectar las tapas de los botes de hemocultivos con alcohol isoprop\u00edlico 70\u00ba<\/li>\n<li>El volumen de extracci\u00f3n ser\u00e1 de 8-10 ml por frasco en los adultos.<\/li>\n<li>No se recomienda realizar extracciones separadas por per\u00edodos de tiempo concretos.<\/li>\n<li>No hay evidencia de que la administraci\u00f3n de antit\u00e9rmicos disminuya su rentabilidad.<\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong>Conclusiones:<\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Se realiza un uso desmedido y t\u00e9cnicamente incorrecto de los hemocultivos. Existen estudios sobre su correcta indicaci\u00f3n y as\u00ed ser m\u00e1s restrictivo en su extracci\u00f3n.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Por otro lado, la gran variabilidad existente en cuanto a la t\u00e9cnica de extracci\u00f3n de hemocultivos, hace necesarias la revisi\u00f3n de los protocolos y la actualizaci\u00f3n de los conocimientos de las enfermeras, con el fin de minimizar la variabilidad cl\u00ednica y mejorar la calidad asistencial.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong><u>INTRODUCCI\u00d3N<\/u><\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Un hemocultivo (HC) se define como la sangre de una \u00fanica venopunci\u00f3n inoculada en dos frascos diferentes, uno para el cultivo en microorganismos aerobios y otro para el cultivo de anaerobios <sup>1<\/sup>. Es la principal herramienta para el diagn\u00f3stico de la bacteriemia. Nos permite conocer la etiolog\u00eda de la infecci\u00f3n, aportan informaci\u00f3n sobre la sensibilidad del microorganismo aislado y posibilita la optimizaci\u00f3n del tratamiento antibi\u00f3tico. Son una herramienta cl\u00ednica y epidemiol\u00f3gica fundamental para la toma de decisiones <sup>2<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Son numerosas las situaciones en las que est\u00e1 indicada la extracci\u00f3n de hemocultivos pero, de forma general, deben realizarse antes de la administraci\u00f3n de terapia antimicrobiana sist\u00e9mica, siempre que exista sospecha cl\u00ednica de sepsis, o cualquier otra infecci\u00f3n grave. Los signos de alarma incluyen fiebre o hipotermia (neonatos, ancianos), escalofr\u00edos, leucocitosis o granulocitopenia, deterioro org\u00e1nico de etiolog\u00eda no aclarada, shock, compromiso hemodin\u00e1mico de causa desconocida, entre otros. Asimismo est\u00e1 indicada la extracci\u00f3n de hemocultivos en ni\u00f1os peque\u00f1os o ancianos con diminuci\u00f3n s\u00fabita de la vitalidad, ya que en estas poblaciones pueden no aparecer los signos y s\u00edntomas t\u00edpicos de la bacteriemia <sup>3,1<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Seg\u00fan el Estudio de Prevalencia de la Infecci\u00f3n Nosocomial en Espa\u00f1a (EPINE) el porcentaje de bacteriemia intrahospitalaria se ha incrementado en los \u00faltimos a\u00f1os, concretamente del 10,6% en 1990 hasta situarse en cifras del 14,8% en el a\u00f1o 2012 <sup>2<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Numerosos estudios muestran que la supervivencia de los pacientes s\u00e9pticos aumenta entre un 30 y 40% cuando se conoce el microorganismo causal, y el paciente recibe el tratamiento adecuado a la susceptibilidad antibi\u00f3tica <sup>4<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Por otro lado, en adultos, se acepta como tasa m\u00e1xima de contaminaci\u00f3n el 3% de los hemocultivos extra\u00eddos <sup>1,3<\/sup>. Sin embargo, estudios actuales concluyen que los resultados falsamente positivos pueden llegar a representar casi el 50%, lo que conlleva importantes consecuencias, como: el incremento de la carga asistencial, el aumento de los costes del laboratorio, de la estancia hospitalaria y de la morbilidad para el paciente <sup>2<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Se considera hemocultivo contaminado el aislamiento de uno de los siguientes microorganismos: Staphylococcus coagulasa-negativo, Streptococcus viridans, Micrococcus spp., Propionibacte- rium spp., Corynebacterium spp. o Bacillus spp. en la mitad o menos de los hemocultivos obtenidos sin significado cl\u00ednico reflejado en la historia del paciente <sup>1,2<\/sup>.<\/p>\n<p><!--nextpage--><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Se ha calculado que un hemocultivo contaminado puede suponer un incremento de la estancia hospitalaria de 4-5 d\u00edas, lo que supone un coste a\u00f1adido al tratamiento de unos 4000 euros <sup>3<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Los procedimientos utilizados por los profesionales de Enfermer\u00eda est\u00e1n directamente relacionados con la contaminaci\u00f3n de las muestras <sup>5<\/sup>. La inadecuada preparaci\u00f3n de la piel ha demostrado ser la causa m\u00e1s frecuente de hemocultivos contaminados y, aunque no es posible su esterilizaci\u00f3n, se recomienda seguir medidas de antisepsia para prevenir la contaminaci\u00f3n. Estas consisten en una correcta higiene de manos, la optimizaci\u00f3n de las medidas barrera durante la inserci\u00f3n y el correcto lavado de la piel <sup>2<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Por todo ello, se hace imprescindible que los profesionales sanitarios conozcan la correcta t\u00e9cnica de extracci\u00f3n, transporte y procesamiento de los hemocultivos <sup>3<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong><u>OBJETIVO<\/u><\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Conocer cu\u00e1les son las recomendaciones, basadas en la evidencia disponible, para la realizaci\u00f3n de una correcta t\u00e9cnica de extracci\u00f3n de hemocultivos.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong><u>METODOLOG\u00cdA<\/u><\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Se realiza una revisi\u00f3n de la literatura utilizando las palabras clave: hemocultivo, contaminado, antis\u00e9ptico, t\u00e9cnica y extracci\u00f3n. Bases de datos: Doyma, La Biblioteca Cochrane Plus, Scielo, Cuiden e Instituto Joanna Briggs. Tambi\u00e9n se han utilizado los metabuscadores Clinical Key y Google Acad\u00e9mico.<\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li>Criterios de inclusi\u00f3n: Se han establecido como l\u00edmites el per\u00edodo de publicaci\u00f3n, seleccionando los art\u00edculos publicados entre 2010-2015; el idioma, seleccionando art\u00edculos en castellano, ingl\u00e9s y portugu\u00e9s. S\u00f3lo se han incluido los art\u00edculos con texto completo. Inicialmente los art\u00edculos son descartados por t\u00edtulo.<\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong><u>RESULTADOS:<\/u><\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Se recuperan un total de 93 y tras una lectura cr\u00edtica por investigadores independientes, se seleccionan 15: 6 protocolos, 4 revisiones bibliogr\u00e1ficas y 5 estudios cuantitativos (semiexperimentales y observacionales).<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Seg\u00fan la bibliograf\u00eda consultada se observa la existencia de una <strong>gran variabilidad<\/strong> en las recomendaciones de la t\u00e9cnica de extracci\u00f3n. El tipo de desinfectante para la preparaci\u00f3n de la piel, la necesidad o no de desinfecci\u00f3n de los tapones de los frascos, la asepsia vs esterilidad de la t\u00e9cnica, el volumen de extracci\u00f3n de sangre y los intervalo de tiempo entre tomas son algunos de los puntos sobre los que no existe consenso <sup>3<\/sup>.<\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li><u>Tipo de desinfectante para la piel<\/u><\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\">La efectividad de cualquier antis\u00e9ptico est\u00e1 relacionada con el tiempo de espera del secado, por lo que es uno de los aspectos a tener en cuenta para la selecci\u00f3n de uno u otro antis\u00e9ptico. La tintura de yodo ejerce su acci\u00f3n pasados 30 segundos desde la aplicaci\u00f3n. La povidona iodada pasados 2 minutos. La clorhexidina acuosa al 2% necesita un tiempo aproximado de 2 minutos. Y la clorhexidina con base alcoh\u00f3lica, 15-30 segundos. As\u00ed, se recomienda una combinaci\u00f3n de clorhexidina alcoh\u00f3lica con alcohol al 70% <sup>4,5<\/sup>. En general, como antis\u00e9pticos cut\u00e1neos, los productos alcoh\u00f3licos parecen ser superiores a las soluciones no alcoh\u00f3licas antes de la punci\u00f3n venosa en la prevenci\u00f3n de la contaminaci\u00f3n de los hemocultivos <sup>6<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">En ni\u00f1os peque\u00f1os, como estas sustancias son potencialmente toxicas o irritantes, se aconseja retirar sus restos usando una torunda con alcohol al 70% al terminar el procedimiento <sup>4<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">En caso de alergia a estos productos se aconseja el uso de alcohol al 70% aplicado 2 veces, en forma de c\u00edrculos de dentro hacia fuera, dejando secar entre cada aplicaci\u00f3n y la punci\u00f3n <sup>4<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">De los art\u00edculos seleccionados, 4 recomiendan el uso de un solo antis\u00e9ptico: clorhexidina alcoh\u00f3lica 0,5% <sup>1,2<\/sup>, povidona yodada <sup>1,7, 8<\/sup> o alcohol isoprop\u00edlico 70\u00aa <sup>7<\/sup>. En un solo art\u00edculo se habla sobre la falta de consenso <sup>9 <\/sup>y en 8, se defiende la combinaci\u00f3n de dos de ellos <sup>3,6,10,11,12,13,14,15 <\/sup>(Ver Fig. 2: \u201cCombinaci\u00f3n de dos antis\u00e9pticos \u00bfCu\u00e1les?\u201d) y (Ver Fig. 1: \u201cRecomendaciones en los art\u00edculos seleccionados\u201d, al final del art\u00edculo).<\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li><u>Desinfecci\u00f3n de los tapones<\/u><\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\">Existe tambi\u00e9n falta de consenso entre diferentes estudios sobre la necesidad de desinfectar las tapas de los botes de hemocultivos. Aunque la mayor\u00eda demuestra que s\u00ed es necesario hacerlo <sup>1,2,4,7,8,10,11,12,13,14 <\/sup>, hay quien solo lo recomienda en caso de no haber utilizado un sistema de vac\u00edo para su extracci\u00f3n <sup>15<\/sup> y quien incluso defiende que no es necesaria la desinfecci\u00f3n <sup>3 <\/sup>(Ver Fig. 3: \u201c\u00bfEs necesario desinfectar las tapas?\u201d). Con respecto a qu\u00e9 desinfectante utilizar, las recomendaciones tampoco son un\u00e1nimes. El 45% de los art\u00edculos (5 en total) aconsejan el uso de soluci\u00f3n antis\u00e9ptica sin especificar cu\u00e1l <sup>1,8,10,11,12<\/sup>; el 36% (4) recomiendan alcohol 70\u00ba <sup>4,7,13,15<\/sup>, recomend\u00e1ndose el uso de clorhexidina alcoh\u00f3lica 0,5% <sup>2<\/sup> y clorhexidina acuosa 2% <sup>14<\/sup> tan solo por un 9% (1) respectivamente (Ver Fig.4: \u201cS\u00ed, es necesario. \u00bfCon qu\u00e9 desinfectante lo hacemos?\u201d, al final del art\u00edculo).<\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li><u>Asepsia vs esterilidad<\/u><\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\">El uso de guantes est\u00e9riles reduce los falsos positivos hasta en un 50%. Se recomienda su colocaci\u00f3n tras preparar la piel y elegir el punto de punci\u00f3n, y tras realizar la higiene de manos. El periodo de espera de secado del antis\u00e9ptico ser\u00eda el momento id\u00f3neo para su colocaci\u00f3n <sup>5<\/sup>. La mayor\u00eda de los estudios revisados coinciden en la necesidad de uso de guantes est\u00e9riles <sup>2, 4, 10, 14, 15<\/sup>. Tan solo un estudio <sup>3<\/sup> refiere la existencia de falta de consenso aunque recomienda t\u00e9cnica est\u00e9ril en la UCI y t\u00e9cnica as\u00e9ptica con guantes est\u00e9riles en el resto de unidades.<\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li><u>Volumen de extracci\u00f3n <\/u><\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\">En adultos, la extracci\u00f3n de 10 ml de sangre, asegura la presencia del 90-95% de los microorganismos <sup>5<\/sup>. Por lo tanto, la mayor\u00eda de los autores<\/p>\n<p><!--nextpage--><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">recomiendan extraer entre 8 y 10 ml por cada hemocultivo <sup>1, 3, 7, 9, 11<\/sup>. Aunque hay estudios m\u00e1s exactos en la cantidad, cuyas recomendaciones son de 10 ml <sup>5, 8, 12<\/sup>, en otros las cantidades var\u00edan entre 7 y 10 ml <sup>4<\/sup>, 5 y 10 ml <sup>2, 10, 13<\/sup> y quienes incluso solo recomiendan extraer 5 ml <sup>14, 15<\/sup> (Ver Fig. 5: \u201c\u00bfCu\u00e1nto volumen extraemos?\u201d, al final del art\u00edculo).<\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li><u>Intervalo de tiempo entre tomas<\/u><\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\">En cuanto al tiempo de espera entre las extracciones, tambi\u00e9n existe una falta de consenso. En el 54,5% de los art\u00edculos (6) no se recomienda realizar extracciones separadas por per\u00edodos de tiempo concretos <sup>1, 9, 10, 12, 13, 14<\/sup>, sobre todo en los pacientes graves o con riesgo elevado de bacteriemia continua, en los que se deben obtener cultivos de dos venopunciones de lugares diferentes distanciadas por unos minutos, con el fin de no demorar la terapia antimicrobiana y ensombrecer el pron\u00f3stico <sup>3, 10<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Del resto de los art\u00edculos seleccionados, tres (27%) coinciden en recomendar un tiempo de espera entre extracciones de entre 15 y 30 minutos <sup>3, 8, 15<\/sup>; en otro, el tiempo de espera es de 60 minutos <sup>4<\/sup> y en el \u00faltimo hablan de hasta 90 minutos <sup>11<\/sup> (Ver Fig. 6: \u201c\u00bfCu\u00e1nto debemos esperar entre extracciones?\u201d). Sin embargo, todos los autores coinciden en la necesidad de extraer las muestras mediante venopunci\u00f3n de lugares diferentes.<\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li><u>Lugar de extracci\u00f3n<\/u><\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\">En los pacientes con sospecha de infecci\u00f3n de cat\u00e9ter se recomienda extraer un hemocultivo por punci\u00f3n de vena perif\u00e9rica y otra a trav\u00e9s del cat\u00e9ter <sup>10<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">La venopunci\u00f3n, consecutiva y en sitio diferente para cada hemocultivo, es el m\u00e9todo de elecci\u00f3n para obtener la muestra. Por lo general se obtiene de los miembros superiores. Es preferible realizar una venopunci\u00f3n en cada brazo para las dos muestras rutinarias <sup>13<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">El \u00fanico motivo para la extracci\u00f3n de hemocultivos de cat\u00e9teres venosos centrales (CVC) es la sospecha de que ese sea el origen de la bacteriemia o para descartarla. En ese caso se debe obtener una muestra de sangre del cat\u00e9ter y otras 2 perif\u00e9ricas a trav\u00e9s de venopunci\u00f3n. Es decir 3 pares de hemocultivos <sup>9<\/sup>.<\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li>No hay evidencia de que la administraci\u00f3n de antit\u00e9rmicos disminuya su rentabilidad <sup>10<\/sup>.<\/li>\n<li>La relaci\u00f3n sangre\/medio debe ser del 5-10%. Si aumenta la concentraci\u00f3n de sangre disminuye la posibilidad de crecimiento microbiano y se corre el riesgo de que la sangre se coagule, atrapando en el coagulo a los microorganismos que pudieran desarrollarse. Si se usa menos cantidad, la posibilidad de tener un inoculo suficiente se ve comprometida <sup>4<\/sup>.<\/li>\n<li>Una vez extra\u00eddos los hemocultivos deben ser introducidos en la incubadora en un plazo no mayor de 2 horas. Para evitar falsos negativos y falsos positivos no debe pasar m\u00e1s de 1 hora entra la extracci\u00f3n y su env\u00edo al laboratorio <sup>4<\/sup>.<\/li>\n<li>La sangre arterial no da mejores resultados que la venosa y no est\u00e1 recomendada <sup>4<\/sup>.<\/li>\n<li><u>Cu\u00e1ndo realizar la extracci\u00f3n<\/u><\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\">Como norma general, los hemocultivos se deben extraer antes de iniciar la terapia antimicrobiana sist\u00e9mica <sup>10<\/sup>. En cuanto a cu\u00e1l es el mejor momento para obtener muestras, existe consenso en considerar que el momento id\u00f3neo ser\u00eda antes de producirse el pico febril <sup>7, 9, 11, 13<\/sup>. Sin embargo, y dada la dificultad que entra\u00f1a predecir un pico febril en la pr\u00e1ctica, se recomienda que la extracci\u00f3n se haga lo antes posible al comenzar la fiebre <sup>9<\/sup>.<\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li><u>Cu\u00e1ntas series<\/u><\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\">El uso de un set de hemocultivo, que incluye dos frascos (uno para cultivo aerobio y otro para anaerobio), eleva la sensibilidad hasta 90%. Mientras que se requieren 3 sets para alcanzar 96% <sup>8<\/sup>. Aun as\u00ed, en tres art\u00edculos se recomienda la extracci\u00f3n de 2 series <sup>9, 11, 12<\/sup>, en otros tres de 3 series <sup>1, 8, 15<\/sup> y en otros dos se indican 2 o 3 <sup>4, 14<\/sup> (Ver Fig. 7: \u201c\u00bfCu\u00e1ntas series debemos extraer?\u201d). En uno de los art\u00edculos en el que se indica la extracci\u00f3n de 2 sets, recomienda ante sospecha de bacteriemia por cat\u00e9ter central la extracci\u00f3n de 3 sets (dos por v\u00eda perif\u00e9rica y la tercera por el cat\u00e9ter <sup>9<\/sup>.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong><u>RECOMENDACIONES PARA LA PR\u00c1CTICA CL\u00cdNICA:<\/u><\/strong><\/p>\n<ul style=\"text-align: justify;\">\n<li>Se recomienda realizar t\u00e9cnica as\u00e9ptica pero con guantes est\u00e9riles<\/li>\n<li>La desinfecci\u00f3n de la piel se realizar\u00e1 con desinfectantes de base alcoh\u00f3lica. La mayor\u00eda de los autores coinciden en recomendar dos desinfectantes: 1\u00ba alcohol isoprop\u00edlico 70\u00ba y 2\u00ba povidona yodada o clorhexidina alcoh\u00f3lica, siempre respetando el tiempo de secado.<\/li>\n<li>Es necesario desinfectar las tapas de los botes de hemocultivos con alcohol isoprop\u00edlico 70\u00ba<\/li>\n<li>El volumen de extracci\u00f3n ser\u00e1 de 8-10 ml por frasco en los adultos.<\/li>\n<li>En la mayor\u00eda de los art\u00edculos no se recomienda realizar extracciones separadas por per\u00edodos de tiempo concretos<\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong><u>CONCLUSIONES:<\/u><\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">Existen numerosos estudios relacionados con el uso de los hemocultivos, consider\u00e1ndose una prueba clave para diagn\u00f3stico de la bacteriemia. Sin embargo, los datos reportados por la bibliograf\u00eda consultada apuntan a que se hace un uso desmedido y t\u00e9cnicamente incorrecto de los hemocultivos. Diversos estudios inciden en la necesidad de ser m\u00e1s restrictivo en su extracci\u00f3n, haci\u00e9ndolo exclusivamente cuando este indicado.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">La gran variabilidad existente en cuanto a la t\u00e9cnica de extracci\u00f3n de hemocultivos, hace necesarias la revisi\u00f3n de los protocolos y la actualizaci\u00f3n de los conocimientos de las enfermeras, con el fin de minimizar la variabilidad cl\u00ednica y mejorar la calidad asistencial.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong><u>Anexos &#8211; Hemocultivos &#8211; Cu\u00e1ndo, C\u00f3mo<\/u><\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><iframe style=\"width: 100%; height: 500px;\" src=\"http:\/\/docs.google.com\/gview?url=http:\/\/www.revista-portalesmedicos.com\/revista-medica\/wp-content\/uploads\/Anexos-Hemocultivos-Cu\u00e1ndo-C\u00f3mo.pdf&amp;embedded=true\" width=\"300\" height=\"150\" frameborder=\"0\"><\/iframe><a href=\"http:\/\/www.revista-portalesmedicos.com\/revista-medica\/hemocultivos-cuando-como\/anexos-hemocultivos-cuando-como\/\" target=\"_blank\" rel=\"attachment wp-att-36112\">Anexos &#8211; Hemocultivos &#8211; Cu\u00e1ndo, C\u00f3mo<\/a><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><!--nextpage--><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\"><strong><u>BIBLIOGRAF\u00cdA:<\/u><\/strong><\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">1. C. S\u00e1nchez Carrillo, M. Rodr\u00edguez-Cr\u00e9ixems, P. Mu\u00f1oz. Indicaciones y valoraci\u00f3n cl\u00ednica del hemocultivo. Medicine. 2010;10(49):3313-6.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">2. B. de Dios Garc\u00eda, Y. Llado Maura, J. Vicente Val-P\u00e9rez, J.M. Arevalo Rupert, J. Company Barcel\u00f3, L. Castillo-Domingo, V. Fernandez, M.C. P\u00e9rez-Seco, A. del Castillo Blanco, M. Borges-Sa. Efectividad de un programa formativo para disminuir los hemocultivos contaminados. Enfermer\u00eda Cl\u00ednica. 2014; 24(2):111-117<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">3. R. S\u00e1nchez Bermejo, B. Rinc\u00f3n Fraile, C. Cort\u00e9s Fadrique, E. Fern\u00e1ndez Centeno, S. Pe\u00f1a Cueva, EM. De las Heras Castro. Hemocultivos\u2026 \u00bfQu\u00e9 te han contado y qu\u00e9 haces? Enfermer\u00eda Global. 2012; 11(26): 146-163.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">4. M.C. Mogdasy. Sepsis y Hemocultivo. Tendencias en Medicina. 2010; 136-137.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">5. J.E. De La Rubia-Ort\u00ed, G. Verdu-Trescol\u00ed, V. Prado-Gasc\u00f3, P. Selvi-Sabater, J. Firmino-Canhoto. Taxa de contamina\u00e7\u00e3o de testes hematol\u00f3gicos e seus fatores determinantes. Acta Paul Enferm. 2014; 27(2):144-50.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">6. D. Caldeira, C. Sampaio. Contaminaci\u00f3n de los hemocultivos. Journal of Hospital Infection. 2011; 223-232.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">7. M. Blanco, E. Scandizzo, Y. Gonzalez, L. Pestana, L. Albarenque. Frecuencia de aislamientos microbiol\u00f3gicos en hemocultivos. Revista Cient\u00edfica Hospital del Cruce. 2011; 10: 8-13.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">8. G. Borga Hern\u00e1ndez, J. Schloeter Rebolledo, J. Rey Puentes. Hemocultivo positivo como factor pronostico en pacientes con patologia hematooncologica y neutropenia febril. Medicina Interna (Caracas) 2014; 30 (4): 217 \u2013 228<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">9. L. Piney Diez de los R\u00edos, M. Rojas Jimenez. Mejora del Rendimiento Diagn\u00f3stico de los Hemocultivos. Lex Artis ad Hoc. International Scientific Journal. 2013; 26-31.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">10. C. Ibero Esparza, E. Regidor Sanz, C. D\u00edaz Pedroche, G. Garc\u00eda de Casasola. Si fiebre, \u00bfhemocultivos? Revista Cl\u00ednica Espa\u00f1ola. 2010; 210(11): 559-566<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">11. F. Gonz\u00e1lez Oviedo, M. L\u00f3pez. Protocolo: Obtenci\u00f3n de muestra de Hemocultivo. Notas de Enfermeria. 2012; 20: 15-17.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">12. Gu\u00eda del Servicio de Microbiolog\u00eda del Hospital Universitario Virgen de las Nieves. 2010; 5: 15-19.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">13. J.A. Martinez Orozco. Lineamientos para la toma de muestras del Servicio de Microbiolog\u00eda. Instituto Nacional de Enfermedades Respiratorias Ismael Cosio Villegas. 2013; 11-15.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">14. F. Garc\u00eda L\u00f3pez, I. Pastor Mart\u00ednez, M.I. Cebrian Camins, A.I. Mu\u00f1oz Jim\u00e9nez, I. L\u00f3pez S\u00e1nchez, A.M. Piqueras Carri\u00f3n, L. Mart\u00ednez Morcillo, L. Soriano Escobar. Protocolo Hemocultivos. Complejo Hospitalario Universitario de Albacete. 2011.<\/p>\n<p style=\"text-align: justify;\">15. T. Garay Rubio, I. Larrea Aretzabaleta, M. Urruela Oliva. Manual de Procedimientos de Enfermer\u00eda. Disponible en: Intranet OSI Bilbao-Basurto. 2015; 317-325.<\/p>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"<p>Hemocultivos: \u00bfCu\u00e1ndo? \u00bfC\u00f3mo? 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